上海莼试生物技术有限公司
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产品名称:
酵母基因组DNA提取试剂盒
型号:
CS-01F99057
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国产
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产品简介
酵母基因组DNA提取试剂盒现货供应,价格实惠。
产品详情

一、概述:

 产品属性: 

产品名称

英文名称

规格

货号

酵母基因组DNA提取试剂盒

Yeast Genomic DNA Extraction Kit

50

CS-01F99057

本试剂盒适用于从酵母样品中提取高纯度的总DNA,本品无需使用苯酚、氯仿等有机溶剂抽提,可获得最大为50 kbDNA,同时对100 bpDNA片段也能有效的回收。本试剂盒采用优化的缓冲液体系使裂解液中的DNA高效结合在硅胶膜上,而其他污染物可流过膜,使用低盐缓冲液或水洗脱,即可获得高纯度的DNA。提取的DNA可直接用于酶切、PCRReal-Time PCR、文库构建、Southern Blot、分子标记等下游实验。

保存条件:Lyticase -20℃,其他组分室温(1530)

自备试剂:无水乙醇,β-巯基乙醇。

产品特点

1、适用于从酵母样品中分离纯化高纯度总DNA

2、无需有机溶剂提取以及乙醇沉淀,彻底去除污染物及下游反应抑制物,快速提取高品质DNA

3Lyticase酶与玻璃珠共同作用,有效破除酵母细胞壁。

实验前准备及重要注意事项:

1、向蛋白酶K 中加入1.25ml 蛋白酶K 储存液使其溶解,-20℃保存。配制好的蛋白酶K 勿长时间室温放置,避免反复冻融,以免影响其活性。

2、样品应避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。对于有些细胞壁较厚以及在培养阶段会产生大量代谢物的酵母,建议在生长早期收集样品。

3Lyticase Working Buffer在使用前请加入β-巯基乙醇,使其终浓度为0.1%

4、第一次使用前应按照试剂瓶标签说明在Buffer GW1Buffer GW2中加入无水乙醇。

5、使用前请检查Buffer GTLBuffer GL是否出现结晶或者沉淀,如有结晶或者沉淀,请将Buffer GTLBuffer GL65℃水浴重新溶解。

6、如果下游实验对RNA污染比较敏感,可以在加入Buffer GL前加入4μl DNase-FreeRNase A(100 mg/ml)RNase A本试剂盒并未提供,如需要可单独向本公司订购,货号:WE0225S

操作步骤:

1、取1-5ml酵母培养物(最多不超过5×107个细胞,一般对于酿酒酵母OD600=1.0时,相当于1-2×107细胞/ml)12000rpm(13400×g)离心1分钟,收集菌体沉淀,尽量吸弃上清。

注意:菌液较多时,可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中。

2、酵母细胞壁的去除:向菌体中加入600μl Lyticase Working Buffer(使用前检查是否加入β-巯基乙醇,使其终浓度为0.1%),并加入5μl Lyticase,充分混匀。30℃处理30分钟。4000rpm(~1,500×g)离心10分钟,弃上清,收集沉淀。

注意:以上为5×107酵母细胞Lyticase用量,根据酵母的菌株和酵母细胞数量的不同,所用的Lyticase的浓度和孵育时间应该进行适当调整。

3、向沉淀中加入200μl Buffer GTL,加入40 mg玻璃珠(Glass Beads),涡旋5分钟。

4、加入20μl 蛋白酶K 混匀。55℃振荡水浴至细胞完全裂解。若无振荡水浴箱,温育期间每20-30分钟颠倒混匀一次。(一般不超过1小时细胞即可完全裂解)

注意:如需去除RNA,在上述步骤完成后加入4μl 100 mg/ml RNase A溶液,震荡混匀,室温放置5-10分钟。

512000rpm离心5分钟,小心吸取上清至新离心管中。

6、加入200μl Buffer GL,充分混匀。70℃孵育10分钟,其间颠倒混匀数次,12000rpm离心5分钟,将上清移到一个新的离心管中。

注意:若孵育后溶液未变清亮,说明细胞裂解不彻底,可能导致提取DNA量少和提取的DNA不纯。

7、加入200μl无水乙醇,充分颠倒混匀,此时可能会出现絮状沉淀。短暂离心,使管壁和管盖上的液体集中到管底。

8、将步骤7所得溶液和沉淀全部加入到已装入收集管的吸附柱DM中,若一次不能加完溶液,可分多次转入。12000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。

9、向吸附柱中加入500μl Buffer GW1(使用前检查是否已加入无水乙醇)12000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。

10、向吸附柱中加入500μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇)12000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。

注意:如需进一步提高DNA纯度,可重复步骤10

1112000rpm离心2分钟,倒掉收集管中废液。将吸附柱置于室温数分钟以彻底晾干。

12、将吸附柱置于一个新的离心管(自备)中,向吸附柱的中间部位悬空加入50-200μl Buffer GE或灭菌水,室温放置2-5分钟,12000rpm离心1分钟,收集DNA溶液,-20℃保存DNA

注意:

1)如果下游实验对pH值或EDTA敏感,可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响,若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围)pH值低于7.0时洗脱效率不高。

2)离心之前室温孵育5分钟可以增加产量。

3)用另外的50-200μl Buffer GE或灭菌水再次洗脱可以增加产量。

4)如果要提高DNA的终浓度,可以将步骤10所得的DNA洗脱液重新加至吸附膜上,重复步骤10;若洗脱体积小于200μl,可以增加DNA的终浓度,但可能会减少总产量。如果DNA的量小于1μg,推荐用50μl Buffer GE或灭菌水洗脱。

5)因为保存在水中的DNA会受到酸性水解作用的影响,如需长期保存,推荐用Buffer GE洗脱并于-20℃保存。
储存条件:室温(1530)

实验步骤:
(1)实验开始前将RNA提取液于65℃水浴锅中预热,离心管中加入ME(巯基乙醇),(10mL加80ul,50mL中加入300ul)
(2)取约0.8g菌丝体(液体培养获得的菌丝用真空抽滤即可!固体培养就更好说了),在液氮中迅速磨成精细粉末,装入50mL离心管,按1g材料8mL的量加入预热的RNA提取液,颠倒混匀  
(3)65℃水浴3-10 min,期间混匀2-3次
(4)加入等体积的酚(注意是酸酚pH4.5)::异戊醇(25:24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(5)取上清,等体积的:异戊醇(24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(6)加入1/4V体积10M LiCl溶液,4℃放置6h以上(或过夜)
(7)10,000rpm,4℃离心20min
(8)弃上清,用500ul SSTE溶解沉淀
(9)酚::异戊醇(25:24:1)抽提两次,:异戊醇(24:1)抽提1次(10,000rpm,4℃,5min)
(10)加2V体积的无水乙醇,在-70℃冰箱沉淀30min以上
(11)12,000rpm,4℃离心20 min
(12)弃上清.沉淀用70%酒精漂洗一次,干燥
(13)加200ul的DEPC处理水溶解
(14)用非变性琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计扫描检测RNA的质量
(在抽提过程中,若蛋白质含量或其它的杂质还较多,可以增加抽提次数)
操作步骤:
1. 匀浆处理:a.组织 将组织在液氮中磨碎,每50-100mg组织加入1ml TRIzol,用匀浆仪进行匀浆处理。样品体积不应超过TRIzol体积10℅。
b.单层培养细胞 直接在培养板中加入TRIzol裂解细胞,每10cm2面积(即3.5cm直径的培养板)加1ml,用移液器吸打几次。TRIzol的用量应根据培养板面积而定,不取决于细胞数。TRIzol加量不足可能导致提取的RNA有DNA污染。
c.细胞悬液 离心收集细胞,每5-10×106动物、植物、酵母细胞或1×107细菌细胞加入1ml TRIzol,反复吸打。加TRIzol之前不要洗涤细胞以免mRNA降解。一些酵母和细菌细胞需用匀浆仪处理。产品仅用于科研
2.将匀浆样品在室温(15-30℃)放置5分钟,使核酸蛋白复合物完全分离。
3.可选步骤:如样品中含有较多蛋白质,脂肪,多糖或胞外物质(肌肉,植物结节部分等)可于2-8℃10000×g离心10分钟,取上清。离心得到的沉淀中包括细胞外膜,多糖,高分子量DNA,上清中含有RNA。处理脂肪组织时,上层有大量油脂应去除。取澄清的匀浆液进行下一步操作。
5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml,剧烈振荡15秒,室温放置3分钟。
6. 2-8℃10000×g离心15分钟。样品分为三层:底层为黄色有机相,上层为无色水相和一个中间层。RNA主要在水相中,水相体积约为所用TRIzol试剂的60℅。
7. 把水相转移到新管中,如要分离DNA和蛋白质可保留有机相,进一步操作见后。用异丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml异丙醇,室温放置10分钟。
8. 2-8℃10000×g离心10分钟,离心前看不出RNA沉淀,离心后在管侧和管底出现胶状沉淀。移去上清。

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