产品特点：

1.使用本试剂盒提取的基因组DNA可适用于各种常规分子生物学操作，如:酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等试验。

2.操作简单安全，1小时内即可获得超纯的基因组DNA，纯化过程中不需要使用苯酚氯仿等有机试剂。

3.应用广泛，适用于多种动物细胞和动物组织等。

4.性价比高，质量和国外同类试剂盒相当，价格更低。

储存条件：常温运输及保存(蛋白酶K溶液需要低温运输，-20℃保存)，有效期一年。

使用方法：

使用前请先在溶液C和通用洗柱液中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。

1.切取不多于30mg的组织材料，放入装有200μL溶液A的离心管中，涡旋振荡15秒。注意：根据提取的组织不同，起始量也稍有不同，腮的细胞量较大，一般建议提取量不超过20mg。如果需要去除RNA，可加入40μL RNase A(10mg/mL)溶液(客户自备，BTN3160)，振荡15秒，室温放置5分钟。

2.加入20μL蛋白酶K溶液(20mg/mL)，涡旋混匀，简短离心以去除管盖内壁的水珠。在56℃下放置，直至组织完全溶解，简短离心以去除管盖内壁的水珠，再进行下一步骤。注意：不同组织裂解时间不同，通常需0.5～2小时即可完成。扇贝组织0.5小时基本可裂解完全，虾和鱼类组织1小时。每小时振荡混合样品2～3次，每次振荡混匀15秒。

3.加入200μL溶液B，充分颠倒混匀，70℃放置10分钟，溶液应变清亮，简短离心以去除管盖内壁的水珠。注意：加入溶液B时可能会产生白色沉淀，一般70℃放置时会消失，不会影响后续实验。如溶液未变清亮，说明细胞裂解不彻底，可能导致提取DNA量少和提取出的DNA不纯。

4.加入200μL无水乙醇，充分颠倒混匀，此时可能会出现絮状沉淀，简短离心以去除管盖内壁的水珠。

5.将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个离心吸附柱中(吸附柱放入收集管中)，12000rpm(～13400×g)离心30秒，倒掉废液，将吸附柱放回收集管中。

6.向离心吸附柱中加入500μL溶液C(使用前请先检查是否已加入无水乙醇)，12000rpm(～13400×g)离心30秒，倒掉废液，将吸附柱放入收集管中。

7.向吸附柱中加入600μL通用洗柱液(使用前请先检查是否已加入无水乙醇)，12000rpm(～13400×g)离心30秒，倒掉废液，将吸附柱放入收集管中。

8.重复操作步骤7。

9.将吸附柱放回收集管中，12000rpm(～13400×g)离心2分钟，倒掉废液。将吸附柱置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。
10.将吸附柱转入一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加50～200μL通用洗脱液，室温放置2～5分钟，12000rpm(～13400×g)离心2分钟，将溶液收集到离心管中。注意：通用洗脱液的体积不应少于50μL，体积过小影响回收效率。为增加基因组DNA的得率，可将离心得到的溶液再加入吸附柱中，室温放置2分钟，12000rpm(～13400×g)离心2分钟。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用超纯水做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5范围内，pH值低于7.0会降低洗脱效率；且DNA产物应保存在-20℃，以防DNA降解。