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产品名称:
柱式真菌DNA提取试剂盒(玻璃珠法)
型号:
CS-01F99006
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产品简介
柱式真菌DNA提取试剂盒(玻璃珠法)现货供应,价格实惠。
产品详情

一、概述:

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柱式真菌DNA提取试剂盒(玻璃珠法)

Fungus DNA Column extraction kit(Glass bead method)

50

CS-01F99006

 

真菌DNA提取是一个难题,一是因为真菌有菌丝体、孢子等多种完全不同的结构形态,二是因为其细胞壁一般都很厚,比较难以破碎。本产品是液氮研磨法柱式真菌DNA提取试剂盒的姊妹产品,它利用玻璃珠法破碎细胞,主要用于从真菌孢子和液体培养的真菌细胞中提取DNA(液氮研磨法柱式真菌DNA提取试剂盒采用液氮研磨法破碎细胞,适用于从真菌菌丝体中提取其基因组DNA)

产品特点:

1. 即开即用,提供包括玻璃珠、离心吸附柱在内的所有试剂和耗材。

2. 采用玻璃珠法破碎细胞,属于物理方法,远比基于蜗牛酶或破壁酶的温和化学破壁法重复性好,也不容易带入外援真菌DNA

3. 本方法提取一个样品只需要10余分钟,方便、快速和高效。

4.一次可以处理5mL的过夜真菌培养物,所得的基因组DNA OD260/OD280一般都在1.8左右,长度一般在20 kb左右,每mL菌液的DNA产率一般在1-3ug。可以直接用于PCR和酶切等后续试验。

储存条件:常温运输及保存,保存期为一年。

使用方法:

1. 对菌液:取3-5mL过夜培养的真菌菌液(OD600一般在1以上)到干净的塑料离心管中,12000rpm离心2分钟弃上清留沉淀。

2. 对菌落:用接种针在在培养基上刮取尽可能多的真菌菌落(50mg),转移到装有1mL水的干净的塑料离心管中,洗涤下接种环上的菌体。12000rpm离心2分钟弃上清留沉淀。

3. 对孢子材料,一般取0.1g左右,直接加入到离心管中,然后进入下一步操作。

4.在材料中加入无菌水1mL,振荡半分钟后12000rpm离心2分钟弃上清留沉淀。

5.沉淀中加入500μl溶液A0.5克的玻璃珠,涡旋震荡10分钟。

6. 加入500μL的溶液B,涡旋震荡3分钟,12000rpm离心2分钟,将上清液全部转移到一个5mL的干净的塑料离心管中。或者每管0.3mL,分别转移到2-31.5mL的干净的塑料离心管中。

7.在上清中加入3倍体积的溶液C,颠倒数次混匀后,分三次上离心吸附柱,每次上柱后均先室温放置2分钟,然后12000rpm离心1分钟,倒掉穿透液,再第二次上柱,重复上面的操作,直到挂柱步骤完成。

8.在离心吸附柱中加入500μl通用洗柱液,12000rpm离心1分钟,倒掉穿透液。

9. 重复上步操作一次。

10. 12000rpm空柱离心1分钟。

11. 加入50-100μl DNA洗脱液2.0,室温放置1分钟以上,12000rpm离心1分钟,穿透液即为真菌DNA样品。

12. 为了得到更多的DNA样品,可以重复上步操作1-2次。
13. 所得DNA即可立即使用或放冰箱长期保存。

实验步骤:
(1)实验开始前将RNA提取液于65℃水浴锅中预热,离心管中加入ME(巯基乙醇),(10mL加80ul,50mL中加入300ul)
(2)取约0.8g菌丝体(液体培养获得的菌丝用真空抽滤即可!固体培养就更好说了),在液氮中迅速磨成精细粉末,装入50mL离心管,按1g材料8mL的量加入预热的RNA提取液,颠倒混匀  
(3)65℃水浴3-10 min,期间混匀2-3次
(4)加入等体积的酚(注意是酸酚pH4.5)::异戊醇(25:24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(5)取上清,等体积的:异戊醇(24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(6)加入1/4V体积10M LiCl溶液,4℃放置6h以上(或过夜)
(7)10,000rpm,4℃离心20min
(8)弃上清,用500ul SSTE溶解沉淀
(9)酚::异戊醇(25:24:1)抽提两次,:异戊醇(24:1)抽提1次(10,000rpm,4℃,5min)
(10)加2V体积的无水乙醇,在-70℃冰箱沉淀30min以上
(11)12,000rpm,4℃离心20 min
(12)弃上清.沉淀用70%酒精漂洗一次,干燥
(13)加200ul的DEPC处理水溶解
(14)用非变性琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计扫描检测RNA的质量
(在抽提过程中,若蛋白质含量或其它的杂质还较多,可以增加抽提次数)
操作步骤:
1. 匀浆处理:a.组织 将组织在液氮中磨碎,每50-100mg组织加入1ml TRIzol,用匀浆仪进行匀浆处理。样品体积不应超过TRIzol体积10℅。
b.单层培养细胞 直接在培养板中加入TRIzol裂解细胞,每10cm2面积(即3.5cm直径的培养板)加1ml,用移液器吸打几次。TRIzol的用量应根据培养板面积而定,不取决于细胞数。TRIzol加量不足可能导致提取的RNA有DNA污染。
c.细胞悬液 离心收集细胞,每5-10×106动物、植物、酵母细胞或1×107细菌细胞加入1ml TRIzol,反复吸打。加TRIzol之前不要洗涤细胞以免mRNA降解。一些酵母和细菌细胞需用匀浆仪处理。产品仅用于科研
2.将匀浆样品在室温(15-30℃)放置5分钟,使核酸蛋白复合物完全分离。
3.可选步骤:如样品中含有较多蛋白质,脂肪,多糖或胞外物质(肌肉,植物结节部分等)可于2-8℃10000×g离心10分钟,取上清。离心得到的沉淀中包括细胞外膜,多糖,高分子量DNA,上清中含有RNA。处理脂肪组织时,上层有大量油脂应去除。取澄清的匀浆液进行下一步操作。
5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml,剧烈振荡15秒,室温放置3分钟。
6. 2-8℃10000×g离心15分钟。样品分为三层:底层为黄色有机相,上层为无色水相和一个中间层。RNA主要在水相中,水相体积约为所用TRIzol试剂的60℅。
7. 把水相转移到新管中,如要分离DNA和蛋白质可保留有机相,进一步操作见后。用异丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml异丙醇,室温放置10分钟。
8. 2-8℃10000×g离心10分钟,离心前看不出RNA沉淀,离心后在管侧和管底出现胶状沉淀。移去上清。

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