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产品名称:
柱式动物线粒体DNA提取试剂盒(测序级)
型号:
CS-01F99004
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国产
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产品简介
柱式动物线粒体DNA提取试剂盒(测序级)现货供应,价格实惠。
产品详情

一、概述:

 产品属性: 

产品名称

英文名称

规格

货号

柱式动物线粒体DNA提取试剂盒(测序级)

Animal mitochondrial DNA column extraction kit(Sequencing Grade)

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CS-01F99004

介绍线粒体是非常重要的细胞器,它不但跟很多人类疾病相关,而且还是母系遗传研究的重要材料。对线粒体进行遗传研究和进化研究都需要纯化线粒体DNA。本产品先纯化动物细胞线粒体、再从中纯化其DNA

产品特点:

即开即用,用户不需要自己配制各种溶液,优化各种条件。

两步法,先纯化线粒体,再柱式法纯化其中的DNA,基因组DNA污染少。

本产品可以用15次,一次可以处理约1×108个培养细胞(相当于5150mm培养细胞),可以纯化到到0.20.5mg线粒体。

适用于各种动物悬浮培养细胞和贴壁培养细胞,不建议用于动物实体组织。

提供线粒体染液,可以在操作中随时监测纯化过程中线粒体的完整性。

运输及保存:

常温运输和保存,保存期限一年。其中有3个成分(见上表)放低温成分袋,低温运输,-20℃保存。

自备试剂:

PBS缓冲液、氯仿、0.5M EDTA溶液(pH8.0)。

TPMT VNTR的上游引物为5 GCT CCG CCC TGC CCA TTT 3

TPMT VNTR的下游引物为5 GCC TCC GCC ACC AAT GAC 3

人线粒体HV2区的上游引物为5 GGT CTA TCA CCC TAT TAA CCA C3

人线粒体HV2区的下游引物为5 CTG TTA AAA GTG CAT ACC GCC A3

使用方法:

注意:线粒体膜对温度高度敏感,所以整个操作必须在冰上或冷室进行,溶液和离心管都需预冷。

一、准备工作

未用完的下列溶液需要-20℃保存,否则容易长菌。下次使用前需溶解沉淀并摇匀。

50mL溶液A250mL溶液B放冰上预冷待用。

配制1.0M低比重溶液100mL:34克蔗糖用100mL溶液B溶解并放冰上待用。

配制线粒体重悬液100mL:75mL溶液B25mL1.0M低比重溶液混合,冰上待用。

二、线粒体粗提

如果提取材料是单层培养细胞,先用20mL自备的PBS缓冲液洗涤1×108个培养的单层细胞,共洗涤2次。然后用塑料刮匙刮下细胞,重悬在20mL PBS缓冲液中。如果是悬浮细胞,则1000g 4℃离心10分钟收集1×108个细胞,再用20mL PBS缓冲液洗涤2次,最后将细胞重悬在20mL PBS缓冲液中。

用平甩转子(swinging-bucket rotor)离心机1000g 4℃离心10分钟,弃上清留沉淀。

加入5倍体积(以细胞沉淀的体积为基数)的预冷的溶液A,轻柔重悬细胞。

冰上放置45分钟。注意:冰浴时间不要超过5分钟。

如果是成纤维细胞,由于其难以裂解,可将细胞重悬液在-80℃放置2030分钟后再化冻,然后进入下步操作。如果不是成纤维细胞,则直接进入下步操作。

将细胞重悬液体转移到预冷的Dounce玻璃匀浆器中(工作体积为1015mL,间隙为0.12mm,最好是玻璃材质,否则线粒体产率会降低)匀浆适当次数。细胞株不同,其最适匀浆次数不同,一般需要40次~60次左右。匀浆是线粒体纯化最关键的步骤,故匀浆前最好先通过预实验确定最适匀浆次数,方法是每匀浆510次后,取23μL匀浆液到载玻片上,然后在相差显微镜下观察,完整细胞数量降低到20%以下为佳。

加入1/3体积的、预冷的1.0M低比重溶液,轻柔混匀。

用平甩转子离心机41000g离心10分钟。沉淀含残留完整细胞、细胞碎片和细胞核,上清液含线粒体。

转移上清液到离心管中,冰上放置。在显微镜下检测上清液中线粒体的完整性。具体做法是先滴50μL左右上清液到载玻片上,再滴入50μL詹纳斯染液绿B染色液20分钟,油镜下观察,蓝绿色颗粒状物即为线粒体。

用固定角度转子(fixed-angle rotor)离心机415000g离心15分钟,弃上清,所得棕黑色沉淀即为粗提线粒体沉淀。

5mL线粒体重悬液重悬线粒体,415000g离心15分钟,弃上清。

重复上步一次。

如果后续实验是提取mtDNA用于PCRSouthern杂交,则直接进入第4部分mtDNA提取,也可以放-80℃长期保存待用。如果后续实验是提取mtDNA用于高通量测序,则必须彻底降解掉其中的细胞核DNA污染。匀浆过程中一个破裂的细胞核释放出的DNA相当于上百万个线粒体的DNA量之合,所以无论如何小心,粗提线粒体中必有大量的细胞核DNA污染,如果不将其清除,高通量测得的序列将绝大部分来于核DNA而非mtDNA

三、细胞核DNA的去除及鉴定

将线粒体重悬于0.3mL预冷的线粒体重悬液中,取10μL作为未处理线粒体(后面将使用)。

加入6μL Benzonase1U/uL)溶液和30μL DNase A溶液(配法:将0.5mL 10×DNase A反应液加到装有5mg DNase A干粉的离心管中得到10mg/mL DNase A溶液,未用完的此溶液需要分装后放-20℃保存)。

37℃保温一段时间酶切细胞核DNA。注意:最好先预实验,每隔一段时间取10μL样品,灭活其中的DNase后作为模板用PCR扩增人基因组TPMT VNTR位点和人mtDNA HV2(两基因的PCR引物见自备试剂),检测不到VNTR基因而能检测到mtDNA基因的处理时间为最佳。相关引物和PCR试剂需要自备。可用未处理线粒体做对照。

加入10μL自备的0.5M EDTA溶液(pH8.0)以终止酶反应。詹纳斯绿B染色并在显微镜下检查线粒体完整性(操作见上)。

410000g离心10分钟,弃上清。
1mL的预冷线粒体重悬液重悬线粒体后,410000g离心10分钟,弃上清留沉淀。

实验步骤:
(1)实验开始前将RNA提取液于65℃水浴锅中预热,离心管中加入ME(巯基乙醇),(10mL加80ul,50mL中加入300ul)
(2)取约0.8g菌丝体(液体培养获得的菌丝用真空抽滤即可!固体培养就更好说了),在液氮中迅速磨成精细粉末,装入50mL离心管,按1g材料8mL的量加入预热的RNA提取液,颠倒混匀  
(3)65℃水浴3-10 min,期间混匀2-3次
(4)加入等体积的酚(注意是酸酚pH4.5)::异戊醇(25:24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(5)取上清,等体积的:异戊醇(24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(6)加入1/4V体积10M LiCl溶液,4℃放置6h以上(或过夜)
(7)10,000rpm,4℃离心20min
(8)弃上清,用500ul SSTE溶解沉淀
(9)酚::异戊醇(25:24:1)抽提两次,:异戊醇(24:1)抽提1次(10,000rpm,4℃,5min)
(10)加2V体积的无水乙醇,在-70℃冰箱沉淀30min以上
(11)12,000rpm,4℃离心20 min
(12)弃上清.沉淀用70%酒精漂洗一次,干燥
(13)加200ul的DEPC处理水溶解
(14)用非变性琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计扫描检测RNA的质量
(在抽提过程中,若蛋白质含量或其它的杂质还较多,可以增加抽提次数)
操作步骤:
1. 匀浆处理:a.组织 将组织在液氮中磨碎,每50-100mg组织加入1ml TRIzol,用匀浆仪进行匀浆处理。样品体积不应超过TRIzol体积10℅。
b.单层培养细胞 直接在培养板中加入TRIzol裂解细胞,每10cm2面积(即3.5cm直径的培养板)加1ml,用移液器吸打几次。TRIzol的用量应根据培养板面积而定,不取决于细胞数。TRIzol加量不足可能导致提取的RNA有DNA污染。
c.细胞悬液 离心收集细胞,每5-10×106动物、植物、酵母细胞或1×107细菌细胞加入1ml TRIzol,反复吸打。加TRIzol之前不要洗涤细胞以免mRNA降解。一些酵母和细菌细胞需用匀浆仪处理。产品仅用于科研
2.将匀浆样品在室温(15-30℃)放置5分钟,使核酸蛋白复合物完全分离。
3.可选步骤:如样品中含有较多蛋白质,脂肪,多糖或胞外物质(肌肉,植物结节部分等)可于2-8℃10000×g离心10分钟,取上清。离心得到的沉淀中包括细胞外膜,多糖,高分子量DNA,上清中含有RNA。处理脂肪组织时,上层有大量油脂应去除。取澄清的匀浆液进行下一步操作。
5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml,剧烈振荡15秒,室温放置3分钟。
6. 2-8℃10000×g离心15分钟。样品分为三层:底层为黄色有机相,上层为无色水相和一个中间层。RNA主要在水相中,水相体积约为所用TRIzol试剂的60℅。
7. 把水相转移到新管中,如要分离DNA和蛋白质可保留有机相,进一步操作见后。用异丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml异丙醇,室温放置10分钟。
8. 2-8℃10000×g离心10分钟,离心前看不出RNA沉淀,离心后在管侧和管底出现胶状沉淀。移去上清。

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