注意事项：

样品应避免反复冻融，否则会导致提取的DNA片段较小且提取量也下降。

若试剂盒中的溶液出现沉淀，可在65℃水浴中重新溶解后再使用，不影响提取效果。

使用前请根据使用量将10×红细胞裂解液用水稀释成1×的即用型红细胞裂解液。

使用方法：

本操作步骤以1mL全血为例

样品的处理：在血液中加入3倍体积的1×红细胞裂解液(请确认已经稀释过)，充分颠倒混匀，12000rpm离心1min(如为大量提取并且为大离心机，可11000转离心5min)，小心吸去上清，再加入2倍体积的1×红细胞裂解液，用移液器轻轻吹打沉淀，充分混匀，离心，弃上清，沉淀为白细胞。

向沉淀中加500μL白细胞裂解液，振荡或者用移液器吹打至彻底混匀。65℃水浴10～20min，期间可颠倒离心管混匀数次，直至溶液较为清澈看不见明显细胞为止。

加入500μL蛋白沉淀液，充分颠倒混匀，此时会出现白色沉淀，65℃水浴5min，12000rpm离心5min，小心吸取上清(不要吸到下层沉淀或漂浮不溶物)，转移到干净离心管中，如还有沉淀物，可再次离心。

在上清中加入1mL异丙醇，混匀。12000rpm离心5min，可看到管底有少量白色DNA沉淀，弃掉上清。

向离心管中加入1mL 75%乙醇，12000rpm离心5min，弃去上清液。可再次短暂离心用移液器去除残余上清。

将离心管敞口置于室温或50℃温箱放置数分钟，否则乙醇可能影响后续的实验如酶切、PCR等。

向离心管中加入100～300μL DNA溶解液，室温放置让DNA自然溶解。如果DNA难于溶解，可室温放置过夜或将离心管置于50～60℃水浴中水浴加热5min。