上海莼试生物技术有限公司
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分子生物学试剂 > DNA提取纯化 > 无内毒素质粒中提试剂盒(5~15mL)
产品名称:
无内毒素质粒中提试剂盒(5~15mL)
型号:
CS-01F96519
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无内毒素质粒中提试剂盒(5~15mL)现货供应,价格实惠。
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一、概述:

产品属性:

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规格

货号

无内毒素质粒中提试剂盒(515mL

Endo-Free Plasmid Midi Kit515mL

50

CS-01F96519

本试剂盒通过碱裂解法裂解细胞,新型硅基质膜高效专一的结合质粒DNA,同时采用特殊的缓冲液系统和除内毒素过滤柱,有效去除内毒素、蛋白等杂质。由本试剂盒所得质粒纯度高、质量稳定,特别适用于细胞转染,同时也可用于DNA测序,PCR,基于PCR的突变,体外转录,转化细菌,内切酶消化等下游实验。

内毒素是质粒提取中常见的污染物,由于真核细胞对内毒素非常敏感,因此,如果质粒中含有内毒素会大大降低真核细胞转染效率。本试剂盒提供一种简单、快捷、高效提取无内毒素质粒的新方法,提取的质粒大限度去除内毒素,并能有效去除基因组DNARNA、蛋白等污染。

保存:室温(1530)

自备试剂:无水乙醇、异丙醇。

实验前准备及重要注意事项:

所有组分可在干燥、室温(1530)环境稳定保存1年,更长时间保存可置于28℃,加入RNase ABuffer P1置于28℃可稳定保存6个月。

次使用前,将RNase A溶液全部加入到Buffer P1中,混匀,置于28℃保存,使用前需在室温中放置一段时间,恢复至室温后使用。

次使用前应按照试剂瓶标签的说明在Buffer PW中加入无水乙醇。

使用前请先检查Buffer P2Buffer E3是否出现结晶或沉淀,如有结晶或沉淀现象,可在37℃水浴几分钟,即可恢复澄清。

注意不要直接接触Buffer P2Buffer E3,使用后应立即盖紧盖子。

提取质粒的量和纯度与细菌培养浓度、菌株种类、质粒大小、质粒拷贝数等因素有关。

操作步骤:

515mL过夜培养的菌液,加入离心管(自备)中,13000rpm(~16200×g)离心1分钟收集细菌,尽量吸弃全部上清。

向留有菌体沉淀的离心管中加入500μL Buffer P1(请先检查是否已加入RNase A),使用移液器或涡旋振荡器充分混匀,悬浮细菌沉淀。

注意:如果菌块未彻底混匀,将会影响裂解效果,使提取量和纯度偏低。

向离心管中加入500μL Buffer P2,温和地上下颠倒混匀810次,使菌体充分裂解,室温放置35分钟。此时溶液应变得清亮粘稠。

注意:温和混匀,不要剧烈震荡,以免打断基因组DNA,造成提取的质粒中混有基因组DNA片段。如果溶液未变得清亮,提示可能菌量过大,裂解不彻底,应减少菌体量。

向离心管中加入500μL Buffer E3,立即上下颠倒混匀810次,此时出现白色絮状沉淀,室温放置5分钟。13000rpm离心5分钟,吸取上清,将上清加入过滤柱FM(已装入收集管)13000rpm离心1分钟过滤,将收集管中的滤液转移到离心管(自备)中。

注意:

Buffer E3加入后应立即混匀,避免产生局部沉淀。

吸附柱的大容积为750μL,所以上清液请分两次过滤,并混合于同一自备离心管中。

向滤液中加入450μL异丙醇,上下颠倒混匀。

柱平衡:向已装入收集管的吸附柱中加入200μL Buffer PS13000rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。

将步骤5中滤液与异丙醇的混合溶液转移到平衡好的吸附柱(已装入收集管)中。

13000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。

注意:吸附柱的大容积为750μL,所以第5步中所得溶液分多次过柱。

向吸附柱中加入750μL Buffer PW(请先检查是否已加入无水乙醇)13000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液。

将吸附柱重新放回收集管中,13000rpm离心1分钟。

注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR)

将吸附柱置于一个新的离心管(自备)中,向吸附膜的中间部位加入100200μL Endo-Free Buffer EB,室温放置25分钟,13000rpm离心2分钟。-20℃保存质粒。

注意:

为了增加质粒的回收效率,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,室温放置25分钟,13000rpm离心2分钟。Endo-Free Buffer EB6570℃水浴预热,适当延长吸附和洗脱的时间,可以增加提取效率。

 

质粒拷贝数较低或>10kb时,Endo-Free Buffer EB6570℃水浴预热,可以增加提取效率。

实验步骤:
(1)实验开始前将RNA提取液于65℃水浴锅中预热,离心管中加入ME(巯基乙醇),(10mL加80ul,50mL中加入300ul)
(2)取约0.8g菌丝体(液体培养获得的菌丝用真空抽滤即可!固体培养就更好说了),在液氮中迅速磨成精细粉末,装入50mL离心管,按1g材料8mL的量加入预热的RNA提取液,颠倒混匀  
(3)65℃水浴3-10 min,期间混匀2-3次
(4)加入等体积的酚(注意是酸酚pH4.5)::异戊醇(25:24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(5)取上清,等体积的:异戊醇(24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(6)加入1/4V体积10M LiCl溶液,4℃放置6h以上(或过夜)
(7)10,000rpm,4℃离心20min
(8)弃上清,用500ul SSTE溶解沉淀
(9)酚::异戊醇(25:24:1)抽提两次,:异戊醇(24:1)抽提1次(10,000rpm,4℃,5min)
(10)加2V体积的无水乙醇,在-70℃冰箱沉淀30min以上
(11)12,000rpm,4℃离心20 min
(12)弃上清.沉淀用70%酒精漂洗一次,干燥
(13)加200ul的DEPC处理水溶解
(14)用非变性琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计扫描检测RNA的质量
(在抽提过程中,若蛋白质含量或其它的杂质还较多,可以增加抽提次数)
操作步骤:
1. 匀浆处理:a.组织 将组织在液氮中磨碎,每50-100mg组织加入1ml TRIzol,用匀浆仪进行匀浆处理。样品体积不应超过TRIzol体积10℅。
b.单层培养细胞 直接在培养板中加入TRIzol裂解细胞,每10cm2面积(即3.5cm直径的培养板)加1ml,用移液器吸打几次。TRIzol的用量应根据培养板面积而定,不取决于细胞数。TRIzol加量不足可能导致提取的RNA有DNA污染。
c.细胞悬液 离心收集细胞,每5-10×106动物、植物、酵母细胞或1×107细菌细胞加入1ml TRIzol,反复吸打。加TRIzol之前不要洗涤细胞以免mRNA降解。一些酵母和细菌细胞需用匀浆仪处理。产品仅用于科研
2.将匀浆样品在室温(15-30℃)放置5分钟,使核酸蛋白复合物完全分离。
3.可选步骤:如样品中含有较多蛋白质,脂肪,多糖或胞外物质(肌肉,植物结节部分等)可于2-8℃10000×g离心10分钟,取上清。离心得到的沉淀中包括细胞外膜,多糖,高分子量DNA,上清中含有RNA。处理脂肪组织时,上层有大量油脂应去除。取澄清的匀浆液进行下一步操作。
5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml,剧烈振荡15秒,室温放置3分钟。
6. 2-8℃10000×g离心15分钟。样品分为三层:底层为黄色有机相,上层为无色水相和一个中间层。RNA主要在水相中,水相体积约为所用TRIzol试剂的60℅。
7. 把水相转移到新管中,如要分离DNA和蛋白质可保留有机相,进一步操作见后。用异丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml异丙醇,室温放置10分钟。
8. 2-8℃10000×g离心10分钟,离心前看不出RNA沉淀,离心后在管侧和管底出现胶状沉淀。移去上清。

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