测定原理：

BAX在碱性环境碱催化木聚糖降解成还原性寡糖和单糖，在沸水浴条件下进一步与3,5+二硝基水杨酸发生显色反应，在540nm处有特征吸收峰，反应液颜色的深浅与酶解产生的还原糖量成正比，通过测定反应液在540nm吸光值增加速率，可计算BAX活力。

自备实验用品及仪器：

天平、低温离心机、恒温水浴锅，可见分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96孔板和蒸馏水。

试剂组成和配制：

缓冲液：液体65mL×1瓶，4℃保存。

试剂一：液体10mL×1瓶，4℃避光保存。（若出现白色絮状或颗粒状沉淀，可60℃加热溶解后使用）。

试剂二：液体10mL×1瓶，4℃避光保存。

粗酶提取：

1.发酵液：发酵液于8000g，4℃，离心15min，取上清，作为待测样品。

2.酶干粉：称约0.1mg，加1mL缓冲液溶解待测。

3.组织样本：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL缓冲液）进行冰浴匀浆，然后8000g，4℃，离心10min，取上清待测。

测定操作表：

1、分光光度计/酶标仪预热30min，调节波长至540nm。

2、操作表

BAX计算公式：

a.用微量石英比色皿测定的计算公式如下

标准曲线：y = 2.8432x - 0.0293，R2 = 0.9985

1. 按液体体积活力计算：

酶活定义：50℃，pH9.0条件下，每毫升液体样本每分钟分解木聚糖产生1nmol 还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。

BAX活力（nmol/min/mL）= （ΔA+0.0293）÷2.8432÷150÷T×稀释倍数×106

= 391× (ΔA+0.0293)

2. 按蛋白浓度计算：

酶活定义：50℃，pH9.0条件下，每毫克蛋白每分钟分解木聚糖产生1nmol 还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。

BAX活力（nmol/min/mg prot）= （ΔA +0.0293）÷2.8432÷150÷T×稀释倍数×106÷Cpr

= 391×(ΔA +0.0293 ) ÷Cpr

3. 按鲜重计算：

酶活定义：50℃，pH9.0条件下，每克样本每分钟分解木聚糖产生1nmol 还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。

BAX活力（nmol/min/g鲜重）= （ΔA +0.0293）÷2.8432÷150÷T×稀释倍数×106÷W

= 391×(ΔA +0.0293 ) ÷W

150：木糖的分子量；T：反应时间，30min；稀释倍数=V反总÷V样=300μL÷60μL=5；

106：转化因子，即1mg/mL=106ng/mL；Cpr：样本蛋白浓度，mg/mL；W：样本质量，g。

b.用96孔板测定的计算公式如下

标准曲线：y = 1.4216x - 0.0293，R2 = 0.9985

1. 按液体体积活力计算：

酶活定义：50℃，pH9.0条件下，每毫升液体样本每分钟分解木聚糖产生1nmol 还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。

BAX活力（nmol/min/mL）= （ΔA+0.0293）÷1.4216÷150÷T×稀释倍数×106

= 782× (ΔA+0.0293)

2. 按蛋白浓度计算：

酶活定义：50℃，pH9.0条件下，每毫克蛋白每分钟分解木聚糖产生1nmol 还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。

BAX活力（nmol/min/mg prot）= （ΔA +0.0293）÷1.4216÷150÷T×稀释倍数×106÷Cpr

= 782×(ΔA +0.0293 ) ÷Cpr

3. 按鲜重计算：

酶活定义：50℃，pH9.0条件下，每克样本每分钟分解木聚糖产生1nmol 还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。

BAX活力（nmol/min/g鲜重）= （ΔA +0.0293）÷1.4216÷150÷T×稀释倍数×106÷W

= 782×(ΔA +0.0293 ) ÷W

150：木糖的分子量；T：反应时间，30min；稀释倍数=V反总÷V样=300μL÷60μL=5；

106：转化因子，即1mg/mL=106ng/mL；Cpr：样本蛋白浓度，mg/mL；W：样本质量，g。

注意事项：

1. 吸光度变化应该控制在0.01～0.8之间，否则加大样品量或稀释样品，注意计算公式中参与计算的稀释倍数要相应改变；也可以延长或者缩短反应时间。

2. 试剂盒2+8℃保存，保质期3个月，建议尽快使用。