测定原理：

TPX催化H2O2氧化二硫苏糖醇（DTT），H2O2的吸收波长为240nm，通过测定240nm吸光度的下降速率，即可计算出TPX活性。

自备仪器和用品:

紫外分光光度计、低温离心机、水浴锅、可调节移液器、1mL石英比色皿和蒸馏水

试剂组成和配制:

试剂一：液体50mL×1瓶，室温保存。

试剂二：液体50mL×1瓶，- 20℃保存。

试剂三：液体5mL×1瓶，4℃。

粗酶液提取：

1.组织：按照组织质量（g）：试剂一体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL试剂一）进行冰浴匀浆。8000g，4℃离心10min，取上清置冰上待测。

2.细菌、真菌：按照细胞数量（104个）：试剂一体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1mL试剂一），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后8000g，4℃，离心10min，取上清置于冰上待测。

3.血清等液体：直接测定。

TPX测定操作：

1. 分光光度计预热30min，调节波长到240 nm，蒸馏水调零。

2.试剂二置于25℃（一般物种）或者37℃（哺乳动物）水浴预热30 min。

3.取1mL石英比色皿，加入20 μ L上清液，900 μ L试剂二，80 μ L试剂三，迅速混匀后于240 nm测定10 s和130 s吸光度，记为A1和A2。

TPX活性计算公式：

(1). 按蛋白浓度计算

活性单位定义：25℃或者37℃中，每毫克蛋白每分钟催化1nmol H2O2降解为1个酶活单位。

TPX活性（nmol/min /mg prot）=(A1－A2)÷ε÷d×V反总÷（Cpr×V样）÷T

=573×(A1－A2)÷Cpr

(2). 按样本质量计算

活性单位定义：25℃或者37℃中，每克样本每分钟催化1nmol H2O2降解为1个酶活单位。

TPX活性（nmol/min/g鲜重）=(A1－A2)÷ε÷d×V反总÷(W×V样÷V样总)÷T

=573×(A1－A2)÷W

（3）按细胞数量计算

活性单位定义：25℃或者37℃中，每104个细胞每分钟催化1nmol H2O2降解为1个酶活单位。

TPX活性（nmol/min/104 cell）=(A1－A2)÷ε÷d×V反总÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T

=573×(A1－A2)÷细胞数量

（4）按液体体积计算

活性单位定义：25℃或者37℃中，每毫升液体每分钟催化1nmol H2O2降解为1个酶活单位。

TPX活性（nmol/min /mL）=(A1－A2)÷ε÷d×V反总÷V样÷T

=573×(A1－A2)

ε：H2O2的摩尔消光系数，43600 L/mol/cm=0.0436 L/μmol/cm；d：比色皿光径，1cm；V反总：反应体系总体积（L），1000 μ L=0.001 L；Cpr：上清液蛋白质浓度（mg/mL）；V样：加入反应体系中上清液体积（mL），20 μ L=0.02 mL；V样总：加入提取液体积，1mL；W，样本质量，g；T：反应时间（min），2min。