测定原理：

GR能催化NADPH还原GSSG再生GSH，同时NADPH脱氢生成NADP+；NADPH在340 nm有特征吸收峰，相反NADP+在该波长无吸收峰；通过测定340 nm吸光度下降速率来测定NADPH脱氢速率，从而计算GR活性。

自备仪器和用品：

紫外分光光度计、低温离心机、水浴锅、移液器、1mL石英比色皿和蒸馏水

试剂组成和配置：

试剂一：液体100mL×1瓶，4℃保存。

试剂二：粉剂×2瓶，-20℃保存。临用前加入3 mL蒸馏水，混匀。

试剂三：粉剂×2支，-20℃保存。临用前加入1.5 mL蒸馏水，混匀。

粗酶液提取：

1.组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL试剂一）进行冰浴匀浆。8000g，4℃离心15min，取上清，置冰上待测。

2.细菌、真菌：按照细胞数量（104个）：提取液体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1mL试剂一），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后8000g，4℃，离心15min，取上清置于冰上待测。

3.血清等液体：直接测定。

操作步骤：

1. 分光光度计预热30 min，调节波长到340 nm，蒸馏水调零。

2. 试剂一置于25℃（普通物质）或者37℃（哺乳动物）中预热30min。

3. 测定管：取1mL石英比色皿，依次加入50μL试剂三，100μL试剂二， 750μL试剂一，100μL上清液，混匀，于340nm迅速测定初始吸光度和180 s吸光度，记为A测1和A测2，△A测定管= A测1﹣A测2。(注意加完上清液后迅速混匀测定)

计算公式：

(1). 按蛋白浓度计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每毫克蛋白每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/mg prot)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×109]÷[Cpr×V样]÷T

= 536×△A测定管÷Cpr

(2). 按样本质量计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每克样本每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/g 鲜重)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×109] ÷(W×V样÷V样总)÷T

= 536×△A测定管÷W

(3) 按细胞数量计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每104个细胞每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/104 cell)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×109] ÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T

= 536×△A测定管÷细胞数量

（4）按液体体积计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每毫升液体每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/mL)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×109]÷×V样÷T

= 536×△A测定管

ε：NADPH摩尔消光系数6.22×103L/mol/cm；V反总：反应体系总体积，1000μL=0.001 L；106：1 mol=1×106μmol； Cpr：上清液蛋白浓度（mg/mL）；V样：加入反应体系中上清液体积，100μL =0.1 mL；V样总：加入提取液体积，1mL；W，样本质量，g；T：反应时间，3 min。

注意事项：

（1）样品处理等过程均需要在冰上进行，且须在当日测定酶活力，匀浆液避免反复冻融；

（2）试剂二和试剂三须现配现用，配制完后，置于冰上，未使用完的4℃保存，三天内使用完。

（3）测定前须先用1～2个样做预实验，哺乳动物组织一般须用试剂一稀释2～5倍。

（4）细胞中GR活性测定时，细胞数目须在300万-500万之间，细胞中GR的提取时可加试剂一后研磨或超声波处理，不能用细胞裂解液处理细胞。