产品名称 | 检测方法 | 规格 | 货号 |
磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(PEPC)试剂盒 | 分光光度法 | 50管/48样 | CS-01S63447 |
PEPC(EC
测定原理:
PEPC催化磷酸烯醇式丙酮酸和CO2生成草酰乙酸和HPO42-,苹果酸脱氢酶进一步催化草酰乙酸和NADH生成苹果酸和NAD+,在340nm测定NADH减少速率,计算PEPC活性。
需自备的仪器和用品:
紫外分光光度计、台式离心机、可调式移液器、1 mL石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂的组成和配制:
提取液:60mL×1瓶,4℃保存;
试剂一:液体30 mL×1瓶, 4℃保存;
试剂二:液体10 mL×1瓶, 4℃保存;
试剂三:粉剂×2支,-20℃保存,临用前加入4mL蒸馏水充分溶解待用;现配现用。
试剂四:粉剂×1支,-20℃保存,临用前加入5mL蒸馏水充分溶解待用;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
试剂五 :原液20μL×1支,4℃保存;
试剂五:稀释液10mL×1瓶,4℃保存;
样本的前处理:
1、细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
2、组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
3、血清(浆)样品:直接检测。
测定步骤:
1、分光光度计预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。
2、试剂五工作液的配制:将试剂五原液:试剂五稀释液=1μL:329μL稀释,用多少配多少。
3、将试剂一、二、三、四和试剂五工作液置于37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)预热5分钟。
4、加样表:
注意事项:如果一次性测定样本数较多,可将试剂一、二、三、四、和试剂五工作液按比例配成混合液。
PEPC活性计算:
1、血清(浆)PEPC活力计算
单位定义:每毫升血清(浆)每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
PEPC(nmol/min/mL))=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷V样÷T=1624×ΔA
2、组织、细菌或细胞中PEPC活力计算
(1)按样本蛋白浓度计算
单位定义:每mg组织蛋白每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位。
PEPC(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr) ÷T=1624×ΔA÷Cpr
(2)按样本鲜重计算
单位定义:每g组织每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
PEPC(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W ×V样÷V样总)÷T=1624×ΔA÷W
(3)按细菌或细胞密度计算:
单位定义:每1万个细胞每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
PEPC(nmol/min/104 cell)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总)÷T=3.248×ΔA
V反总:反应体系总体积,1.010×10-3 L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103 L / mol /cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.02 mL;V样总:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,5 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500万。
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